Uso Exclusivo en Investigación. Todo compuesto referenciado en esta página se suministra para investigación de laboratorio y análisis. Nada aquí es para uso humano o veterinario, ingestión, inyección, ni ninguna forma de administración. Las tablas en esta página son aritmética de preparación para referencia de protocolo de laboratorio: convierten una masa de péptido etiquetada y un volumen de diluyente en una concentración de solución. No son una tabla de dosificación, no describen un calendario de administración, y ninguna cifra en esta página debe leerse como una cantidad recomendada de nada para una persona o un animal.
Respuesta Rápida: La Fórmula de Reconstitución
La concentración equivale a la masa total de péptido dividida entre el volumen de diluyente. Un vial de 10mg reconstituido con 2mL de agua bacteriostática produce 5 mg/mL, o 5,000 mcg/mL. La aritmética nunca cambia según el compuesto: solo cambian los dos números de entrada. Multiplique cualquier cifra en mg/mL por 1,000 para expresarla en mcg/mL.
La Tabla Maestra de Reconstitución de Péptidos
Diez masas de vial cruzadas contra los cinco volúmenes de agua bacteriostática que aparecen con más frecuencia, con cada resultado expresado tanto en mg/mL como en mcg/mL.
Masa del vial | 1 mL | 2 mL | 3 mL | 5 mL | 10 mL |
|---|---|---|---|---|---|
2 mg | 2 mg/mL | 1 mg/mL | 0.67 mg/mL | 0.4 mg/mL | 0.2 mg/mL |
5 mg | 5 mg/mL | 2.5 mg/mL | 1.67 mg/mL | 1 mg/mL | 0.5 mg/mL |
10 mg | 10 mg/mL | 5 mg/mL | 3.33 mg/mL | 2 mg/mL | 1 mg/mL |
15 mg | 15 mg/mL | 7.5 mg/mL | 5 mg/mL | 3 mg/mL | 1.5 mg/mL |
20 mg | 20 mg/mL | 10 mg/mL | 6.67 mg/mL | 4 mg/mL | 2 mg/mL |
30 mg | 30 mg/mL | 15 mg/mL | 10 mg/mL | 6 mg/mL | 3 mg/mL |
50 mg | 50 mg/mL | 25 mg/mL | 16.67 mg/mL | 10 mg/mL | 5 mg/mL |
70 mg | 70 mg/mL | 35 mg/mL | 23.33 mg/mL | 14 mg/mL | 7 mg/mL |
80 mg | 80 mg/mL | 40 mg/mL | 26.67 mg/mL | 16 mg/mL | 8 mg/mL |
100 mg | 100 mg/mL | 50 mg/mL | 33.33 mg/mL | 20 mg/mL | 10 mg/mL |
Dos columnas de esa cuadrícula concentran la mayor parte del uso real. Las columnas de 2mL y 3mL son las que los investigadores eligen la abrumadora mayoría de las veces, porque sitúan las masas de vial comunes en concentraciones convenientes de medir sin ser tan diluidas que la solución de trabajo sobreviva a su ventana de utilidad. La columna de 1mL existe principalmente para viales pequeños, o para quien deliberadamente elabora un concentrado para diluir más adelante.
Las columnas de 5mL y 10mL vienen con una restricción física que ninguna tabla puede mostrarle. Una gran cantidad de viales de investigación son viales de 3mL, incluyendo cada presentación liofilizada del catálogo de 99 Purity Peptides referenciada más adelante en esta página. No se puede poner 5mL de diluyente en un vial de 3mL. Esas dos columnas están aquí porque existen viales de formato más grande y porque los investigadores que construyen diluciones seriadas las solicitan, no porque sean opciones para un vial estándar de 3mL con tapa engarzada. Verifique el vial antes de verificar la tabla.
Cómo Funciona la Fórmula, y Cómo Verificar una Cifra a Mano
Todo se reduce a una sola división. Concentración (mg/mL) = masa de péptido (mg) ÷ volumen de diluyente (mL). Masa arriba, volumen abajo.
La razón por la que esto se cumple es que el péptido liofilizado ocupa casi ningún volumen una vez disuelto. Cuando se añaden 2mL de agua bacteriostática a un vial de polvo liofilizado, el volumen final de la solución es, para efectos prácticos, todavía 2mL. La masa de polvo en un vial de 10mg son diez milésimas de gramo asentadas como una fina torta en el fondo del vidrio, y su contribución al volumen final cae muy por debajo de lo que se podría resolver en el cuerpo de una jeringa. Por eso el cálculo trata el volumen de diluyente y el volumen de solución como el mismo número, y por eso nadie se molesta con una corrección por desplazamiento como la que se usaría para una suspensión concentrada.
Ejemplo resuelto uno. Un vial de 30mg, 3mL de agua bacteriostática. 30 ÷ 3 = 10. La solución es 10 mg/mL. Convertido a microgramos, eso es 10,000 mcg/mL, y cada 0.1mL extraído de ese vial contiene 1mg de masa de péptido etiquetada.
Ejemplo resuelto dos, en sentido inverso. Suponga que el objetivo es 5 mg/mL y el vial es de 20mg. Reordenando, volumen = masa ÷ concentración, así que 20 ÷ 5 = 4mL. Esa forma inversa es la más útil en la práctica, porque los investigadores usualmente saben la concentración que desean y necesitan el volumen que la produce, en lugar de lo contrario.
La conversión de unidades hace tropezar a la gente con más frecuencia que la división misma. Un miligramo son 1,000 microgramos, así que 2.5 mg/mL y 2,500 mcg/mL describen la misma solución de dos formas. Nada se ha diluido ni concentrado entre esos dos números. Los proveedores y las calculadoras cambian entre las unidades sin aviso, razón por la cual ambas aparecen en cada celda de la tabla anterior.
Nota: La fórmula le da la concentración de masa de péptido etiquetada por mililitro. No toma en cuenta el contenido neto de péptido, el cual es una corrección aparte cubierta más adelante en esta página. Para un recorrido narrativo completo de la técnica de reconstitución en lugar de la aritmética, vea la guía de reconstitución con calculadora de péptidos y cuánta agua bacteriostática usar al reconstituir péptidos.
Referencia Rápida por Compuesto
Las masas de vial varían según el compuesto, y la tabla anterior solo ayuda una vez que se sabe en qué fila se está realmente. Estas son presentaciones liofilizadas actualmente listadas en el catálogo de 99 Purity Peptides, con la concentración resultante en los dos volúmenes que un vial de 3mL puede acomodar físicamente.
Compuesto | Masa(s) del vial | A 2 mL | A 3 mL | Referencia completa |
|---|---|---|---|---|
80 mg total (mezcla de 4 componentes) | 40 mg/mL total | 26.67 mg/mL total | ||
70 mg total (mezcla de 3 componentes) | 35 mg/mL total | 23.33 mg/mL total | ||
5 mg / 10 mg | 2.5 / 5 mg/mL | 1.67 / 3.33 mg/mL | ||
5 mg / 10 mg | 2.5 / 5 mg/mL | 1.67 / 3.33 mg/mL | ||
5mg+5mg (10 mg total) / 10mg+10mg (20 mg total) | 5 / 10 mg/mL total | 3.33 / 6.67 mg/mL total |
Note lo que separa las dos primeras filas de las dos intermedias. Un vial de un solo compuesto da una concentración que significa exactamente una cosa. KLOW, GLOW, y la mezcla BPC-157/TB-500 dan una concentración total, y el total no es el número que la mayoría de los protocolos necesita. Esa distinción tiene su propia sección más adelante, porque es el error de mayor consecuencia en todo este tema.
Las concentraciones de vial cambian. Antes de comprometer una cifra a un protocolo, confirme la masa impresa en el vial que tiene físicamente en mano contra la página de producto y el certificado de lote, no contra una tabla escrita en una fecha anterior.
Conversiones de Agua Bacteriostática a Unidades de Jeringa
Una jeringa de insulina U-100 está graduada de modo que 100 unidades llenan exactamente 1mL. Las marcas de unidad en el cuerpo son graduaciones de volumen y nada más: una regla de resolución fina para volúmenes pequeños, donde cada marca de unidad en un cuerpo U-100 equivale a 0.01mL.
Volumen | Cuerpo U-100 | Cuerpo U-40 |
|---|---|---|
0.05 mL | 5 unidades | 2 unidades |
0.1 mL | 10 unidades | 4 unidades |
0.2 mL | 20 unidades | 8 unidades |
0.25 mL | 25 unidades | 10 unidades |
0.5 mL | 50 unidades | 20 unidades |
1.0 mL | 100 unidades | 40 unidades |
La segunda columna es donde se originan los errores de medición. Los cuerpos U-40 están calibrados a 40 unidades por mililitro en lugar de 100, así que el mismo volumen físico se lee como un número de unidades completamente diferente según el cuerpo de jeringa que se haya tomado. Merck Animal Health documenta el tamaño de esa brecha en el contexto de la insulina veterinaria: leer una preparación U-40 en un cuerpo U-100 entrega menos de la mitad del volumen previsto, y el error inverso entrega aproximadamente dos veces y media ese volumen (Merck Animal Health, guía de administración de jeringas Vetsulin). El factor es 2.5 en cualquier dirección. Nada cambió respecto al péptido; cambió la regla de medición.
Los cuerpos U-40 son poco comunes fuera de las cadenas de suministro veterinarias, y precisamente por eso causan problemas cuando aparecen en una caja mixta de insumos. Lea la impresión del cuerpo antes de la primera extracción de un paquete nuevo.
Para la referencia completa de volumen a unidades a través de todo el rango, incluyendo los volúmenes intermedios omitidos aquí, use la tabla dedicada de conversión de agua bacteriostática a unidades de jeringa de insulina.
¿El Contenido Neto de Péptido Cambia Estos Números?
Cambia lo que la cifra significa, no lo que se calcula.
El polvo de péptido liofilizado no es péptido puro por peso. También lleva contraiones y agua residual. La síntesis en fase sólida usa ácido trifluoroacético para la escisión y de nuevo como reactivo de emparejamiento iónico durante la purificación, así que los péptidos sintéticos típicamente se aíslan como sales de trifluoroacetato, con TFA unido a los residuos básicos y al extremo N-terminal libre (Erckes et al., Pharmaceuticals, 2025). Los péptidos también son higroscópicos en un grado dependiente de la secuencia, así que algo de agua unida no covalentemente persiste incluso después de la liofilización.
La masa de etiqueta es, por lo tanto, peso bruto. El contenido neto de péptido, la fracción de ese peso bruto que realmente es péptido, comúnmente cae alrededor de 60–80% para péptidos sintéticos, medido por análisis cuantitativo de aminoácidos o análisis elemental (Biosynth, documentación de analítica de péptidos).
El contenido neto también puede estimarse a partir de la estructura antes de ejecutar cualquier ensayo. Divida el peso molecular del péptido entre ese peso más el número de sitios de unión de contraión multiplicado por el peso molecular del contraión (114 para trifluoroacetato, 59 para acetato). Un péptido de PM 1,000 con dos sitios de unión de TFA disponibles resulta en 1,000 ÷ (1,000 + 228), o aproximadamente 81% (preguntas técnicas frecuentes de AmbioPharm). Más residuos básicos en la secuencia significa más contraión en el polvo y un contenido neto más bajo.
Esto es lo que eso hace a una fila conocida de la tabla maestra. Un vial de 10mg en 2mL es 5 mg/mL de masa etiquetada en todos los casos; solo se mueve el péptido realmente entregado.
Contenido neto de péptido | Péptido real en el vial | Concentración real a 2 mL |
|---|---|---|
100% (teórico) | 10 mg | 5 mg/mL (5,000 mcg/mL) |
85% | 8.5 mg | 4.25 mg/mL (4,250 mcg/mL) |
80% | 8 mg | 4 mg/mL (4,000 mcg/mL) |
75% | 7.5 mg | 3.75 mg/mL (3,750 mcg/mL) |
70% | 7 mg | 3.5 mg/mL (3,500 mcg/mL) |
Al 75% de contenido neto, un protocolo escrito contra la cifra de etiqueta está operando una cuarta parte por debajo de la concentración que cree tener. Para trabajo cualitativo, ese margen suele ser tolerable. Para cualquier cosa cuantitativa, cualquier cosa comparada entre lotes, o cualquier cosa que otro laboratorio intente replicar, no lo es, y es una fuente silenciosa común de discrepancia entre lotes. La corrección usa la misma división de antes, aplicada a la masa corregida: masa neta de péptido ÷ volumen de diluyente.
El contenido neto de péptido y la pureza HPLC responden preguntas diferentes, y confundirlas es un error en sí mismo. La pureza describe qué proporción del péptido presente es la secuencia objetivo en lugar de secuencias de deleción o subproductos de síntesis. El contenido neto describe qué proporción del polvo es péptido en absoluto. Un vial puede ser 99% puro y 72% péptido neto al mismo tiempo, con ambas cifras correctas.
Mezclas de Múltiples Componentes: Por Qué Una Sola Tabla No Es Suficiente
La concentración total de una mezcla no es la concentración de ningún componente individual. Aquí es donde la tabla maestra deja de ser suficiente.
Tome el vial de KLOW. Contiene 80mg de masa total de péptido, distribuidos como un componente a 50mg y tres a 10mg cada uno. Reconstituya con 2mL y la tabla maestra da 40 mg/mL, lo cual es correcto y casi inútil por sí solo, porque nada en ese vial existe a 40 mg/mL. El componente de 50mg está a 25 mg/mL. Cada componente de 10mg está a 5 mg/mL. Los cuatro fueron co-liofilizados, lo cual los fija en una proporción constante: cada alícuota extraída después lleva los cuatro en esa proporción, y ninguna elección de volumen de diluyente puede separarlos.
El mismo razonamiento aplica al vial de GLOW de 70mg, y a la mezcla BPC-157/TB-500, donde la presentación de 10mg+10mg produce 10 mg/mL total a 2mL pero 5 mg/mL de cada componente.
La regla práctica: divida la masa individual de cada componente entre el volumen de diluyente, nunca el total. La referencia de reconstitución y almacenamiento de KLOW trabaja este problema en su totalidad, componente por componente, y es la mejor página para mantener junto a la mesa de trabajo para el trabajo con mezclas.
Errores Comunes de Reconstitución
Seis errores explican la mayoría de las discrepancias de concentración que salen a la luz después del hecho.
Tratar la concentración total de la mezcla como la concentración por componente. Cubierto anteriormente, y con diferencia el elemento más costoso de esta lista, porque produce un número que es aritméticamente correcto y experimentalmente incorrecto.
Confundir el volumen de llenado del vial con un volumen de diluyente instruido. El listado del producto KLOW dice "KLOW 50mg/10mg/10mg/10mg 3ML". Ese 3ML es la capacidad del vidrio, de la misma manera que se describe cualquier otro vial de 3mL. No es una instrucción para añadir 3mL. Los proveedores en esta categoría etiquetan los viales de esta manera, y los investigadores nuevos en el formato rutinariamente leen una especificación de contenedor como un paso de protocolo. El volumen de diluyente es su decisión, limitada solo por el espacio libre.
Usar agua estéril en lugar de agua bacteriostática para un vial de múltiples extracciones. El Agua Bacteriostática para Inyección USP contiene 0.9% (9 mg/mL) de alcohol bencílico como conservante bacteriostático y se suministra en envases de dosis múltiples precisamente para que se puedan realizar extracciones repetidas (Hospira, etiqueta DailyMed). El Agua Estéril para Inyección USP no contiene bacteriostático, ningún agente antimicrobiano, y ningún amortiguador añadido, y su etiqueta indica que se suministra solo en envases de dosis única con la porción no usada desechada (DailyMed, Agua Estéril para Inyección USP). La elección incorrecta no cambia la concentración en absoluto. Cambia cuántas veces se puede entrar al vial.
Sacudir en lugar de agitar en círculos. La agitación vigorosa es un desencadenante de agregación bien caracterizado, y el mecanismo es la interfaz aire-líquido en lugar del movimiento en sí. Trabajo revisado en The AAPS Journal encontró que agitar vigorosamente una proteína en un vial con espacio libre de aire producía agregación extensa, mientras que sacudir bajo condiciones por lo demás idénticas sin espacio libre la limitaba sustancialmente (Li et al., AAPS J, 2019). Un vial de investigación parcialmente lleno es mayormente espacio libre. Dirija el diluyente por la pared interior en lugar de sobre la torta, luego agite en círculos.
Omitir la corrección de contenido neto de péptido. Un desfase silencioso del 20–30% que no se anunciará hasta que alguien intente reproducir el trabajo.
Congelación-descongelación repetida de un vial de trabajo. Los residuos de cisteína, metionina, y triptófano son propensos a la oxidación, y el ciclo de congelación-descongelación acelera esa oxidación (Rehman et al., Advanced Drug Delivery Reviews, 2023). Divida en alícuotas una vez en volúmenes de un solo uso en lugar de ciclar un vial repetidamente a través del congelador.
Referencia Rápida de Almacenamiento y Manejo
Condición | Almacenamiento | Horizonte práctico |
|---|---|---|
Liofilizado, sellado, en tránsito | Ambiente, breve | Días |
Liofilizado, a largo plazo | −20 °C, protegido de la luz, seco | Varios años para la mayoría de las secuencias |
Reconstituido, en uso activo | 2–8 °C | Uso de trabajo a corto plazo |
Reconstituido, alícuotas congeladas | −20 °C | Semanas |
Reconstituido, almacenamiento extendido | −80 °C | Meses |
El material liofilizado es la forma estable por un margen amplio. Eliminar el agua elimina el medio en el cual proceden la hidrólisis y la desamidación, razón por la cual la misma secuencia que sobrevive años como una torta seca a −20 °C protegida de la luz se degrada en un plazo mucho más corto una vez que está en solución (Rehman et al., Advanced Drug Delivery Reviews, 2023).
Dos vías de degradación importan más una vez que un vial está húmedo. La desamidación está catalizada por base y ocurre más rápido donde una asparagina o glutamina se sitúa junto a una glicina, procediendo a través de un intermediario de imida cíclica hacia productos de aspartato e iso-aspartato. La oxidación ataca la cisteína y la metionina, y la oxidación de cisteína se acelera a un pH más alto conforme el tiol se desprotona y forma enlaces disulfuro (Sigma-Aldrich, documentación técnica de estabilidad de péptidos). Vale la pena evitar la exposición prolongada por encima de pH 8 por ambas razones, y el agua bacteriostática se sitúa cómodamente por debajo de eso a pH 5.7 (Hospira, etiqueta DailyMed).
Trate los horizontes anteriores como patrones generales en lugar de una especificación para cualquier secuencia en particular. La composición de la secuencia es el determinante principal de la estabilidad, así que un certificado de lote para el material en mano tiene prioridad sobre cualquier tabla general, esta incluida.
Verificación de las Cifras en Su Propio Vial
Ninguna tabla genérica conoce su lote. Un certificado de análisis sí.
Tres campos cambian lo que la tabla maestra significa para el vial que tiene enfrente. La masa de péptido declarada confirma en qué fila se está realmente. El contenido neto de péptido, cuando se reporta, da un factor de corrección real en lugar de un rango asumido de 60–80%. La pureza HPLC indica qué fracción del péptido es la secuencia objetivo, lo cual sigue siendo una pregunta aparte de cuánto péptido hay en el polvo.
Los certificados son específicos de lote. El COA enlazado desde una página de producto corresponde a un lote particular, y el siguiente lote obtiene su propio documento con sus propias cifras. Compare el código de lote en el certificado con el código de lote en el vial antes de confiar en cualquiera de los dos. Para un recorrido campo por campo de lo que cada sección del documento le indica, vea cómo leer un certificado de análisis, y explore la documentación de lote actual en certificados.
Trabajando a Partir de la Tabla
Esta página existe para entregarle las cifras sin obligarlo a calcularlas, y para dar a los motores de búsqueda y motores de respuesta esas mismas cifras en HTML plano en lugar de detrás de un script. Para cualquier cosa que la cuadrícula anterior no cubra, incluyendo trabajo de concentración objetivo y volúmenes que caen entre las columnas mostradas, la calculadora de péptidos y la calculadora de reconstitución de péptidos aceptan entradas arbitrarias. La documentación de lote actual se encuentra en certificados. Verifique el vial, verifique el lote, luego haga la división.
Frequently Asked Questions
¿Cuánta agua bacteriostática debo usar para un vial de 10mg?
La que sea que produzca la concentración que su protocolo requiere. 1mL da 10 mg/mL, 2mL da 5 mg/mL, y 3mL da 3.33 mg/mL. No hay una única respuesta correcta, porque el volumen es una entrada que usted elige en lugar de una propiedad del vial. La mayoría del trabajo con 10mg se decide por 2mL simplemente porque produce una aritmética redonda.
¿Qué concentración da un vial de 5mg en 2mL?
2.5 mg/mL, que es la misma solución que 2,500 mcg/mL. Cada 0.1mL extraído contiene 0.25mg de masa de péptido etiquetada. Si el certificado de lote reporta un contenido neto de péptido por debajo del 100%, multiplique 2.5 por esa fracción para obtener la concentración real de péptido.
¿Cuántas unidades en una jeringa U-100 son 0.25mL?
25 unidades. Un cuerpo U-100 está graduado de modo que 100 unidades equivalen a 1mL, haciendo que cada marca de unidad sea 0.01mL. En un cuerpo U-40 esos mismos 0.25mL se leen como 10 unidades en su lugar, porque ese cuerpo está calibrado a 40 unidades por mililitro.
¿"3ML" en la etiqueta de un vial significa que debo añadir 3mL de agua?
No. Esa cifra describe la capacidad del vial de vidrio, no una instrucción de diluyente. Un vial de 3mL puede aceptar 1mL, 2mL, o casi 3mL dependiendo de la concentración que desee. La cifra de masa en la etiqueta es la especificación que importa para el cálculo.
¿Puedo usar agua estéril en lugar de agua bacteriostática?
El Agua Estéril para Inyección USP no contiene conservante, y su etiqueta especifica envases de dosis única con el remanente desechado. El agua bacteriostática contiene 0.9% de alcohol bencílico y se suministra para extracciones repetidas. Ninguna de las dos opciones cambia la aritmética de concentración. La diferencia es completamente sobre cuántas veces se puede entrar al vial.
¿Por qué esta tabla no coincide con la cifra que me dio mi calculadora?
Verifique tres cosas en orden: si una cifra está en mg/mL y la otra en mcg/mL, si ingresó la masa total de la mezcla donde la calculadora esperaba un solo componente, y si una de las dos aplicó una corrección de contenido neto de péptido. Esas tres explican casi todas las discrepancias.
¿Cuál es la concentración de un vial de KLOW de 80mg reconstituido con 2mL?
40 mg/mL de masa total de péptido. Ese total no es la concentración de ningún componente individual. El componente de 50mg está a 25 mg/mL y cada componente de 10mg a 5 mg/mL. Los protocolos de mezcla casi siempre necesitan las cifras por componente en lugar del total.
¿10 mg/mL es lo mismo que 10,000 mcg/mL?
Sí, soluciones idénticas. Un miligramo contiene 1,000 microgramos, así que convertir entre las unidades es una multiplicación o división por 1,000 sin ningún cambio a la solución misma. Los proveedores y las calculadoras cambian entre ellas libremente, razón por la cual ambas aparecen a lo largo de esta página.
¿El contenido neto de péptido cambia cuánta agua debo añadir?
No el volumen, solo la interpretación. Usted sigue añadiendo el volumen que da su concentración etiquetada objetivo. Lo que cambia es el péptido realmente entregado: al 75% de contenido neto, una solución nominal de 5 mg/mL contiene 3.75 mg/mL de péptido. Aplique la corrección a la masa, luego divida como de costumbre.
¿Qué sucede si añado más diluyente del que muestra la tabla?
La concentración cae proporcionalmente mientras la masa total de péptido permanece igual. Añadir 4mL a un vial de 10mg da 2.5 mg/mL en lugar de los 5 mg/mL que obtendría a 2mL. Las soluciones muy diluidas conllevan más riesgo por pérdidas de adsorción superficial y porque el vial de trabajo sobreviva a su ventana de estabilidad.
¿Puedo añadir más agua después a un vial que ya reconstituí?
Aritméticamente sí, y la nueva concentración es la masa total dividida entre el volumen combinado total. En la práctica significa otra entrada de aguja, otro evento de agitación, y una solución cuya ventana de utilidad comenzó en la primera reconstitución y no en la segunda. Decidir el volumen antes de la primera entrada es el enfoque más limpio.
¿Por qué el mismo vial en mg da concentraciones diferentes en distintos sitios web?
Casi siempre porque esos sitios asumen volúmenes de diluyente diferentes sin indicarlos. Un vial de 5mg es 5 mg/mL a 1mL y 1 mg/mL a 5mL, y ambas cifras se publican como "la" concentración. Cualquier concentración citada sin su volumen de diluyente es información incompleta.
¿Cuál es la concentración más alta que puedo hacer en un vial de 3mL?
Eso depende tanto del espacio libre como de la solubilidad. Un vial de 3mL contiene ligeramente menos de 3mL de líquido en la práctica, así que una mezcla de 80mg reconstituida con 1mL alcanza 80 mg/mL. Si el polvo se disuelve completamente a esa concentración es una pregunta aparte, dependiente de la secuencia. La disolución lenta o incompleta es la señal habitual de haber llevado el límite demasiado lejos.
¿Cómo calculo la concentración de un componente en una mezcla?
Divida la masa individual de ese componente entre el volumen de diluyente, ignorando por completo los otros componentes. En un vial de GLOW de 70mg reconstituido con 2mL, el componente de 50mg es 50 ÷ 2 = 25 mg/mL, y cada componente de 10mg es 10 ÷ 2 = 5 mg/mL. El total de 35 mg/mL describe la solución pero no ninguna molécula en ella.
